ОБНПалеонтологический журнал Paleontological Journal

  • ISSN (Print) 0031-031X
  • ISSN (Online) 3034-5871

УЛЬТРАСТРУКТУРА КЛЕТОК MIROVIA MACROPHYLLA (FLORIN) NOSOVA (PINOPSIDA) ИЗ НИЖНЕМЕЛОВЫХ ОТЛОЖЕНИЙ ЯКУТИИ

Код статьи
S3034587125050131-1
DOI
10.7868/S3034587125050131
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том / Номер выпуска 5
Страницы
132-138
Аннотация
Представлены результаты цитохимического и анатомического исследований листа хвойного растения Mirovia macrophylla из нижнемеловых отложений Ленского угленосного бассейна Якутии. Впервые для раннемелового хвойного выявлены клетки с сохранившимися ядрами, однако в ядерном хроматине ДНК-дезоксирибозный скелет, служащий мишенью для реагента Шиффа во время реакции Фёльгена, не сохранился. В клетках листа также обнаружены хлоропласты, имеющие тилакоидную систему. В хлоропластах встречаются включения, из которых более крупные, скорее всего, являются крахмальными зернами, а более мелкие – пластоглобулами. В некоторых клетках выявлены бороздчатые глобулы, предположительно являющиеся танинами.
Ключевые слова
хвойное цитохимический метод ядра хлоропласты тилакоидная система танины
Дата публикации
08.04.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
6

Библиография

  1. 1. Барыкина Р.П., Веселова Т.Д., Девятов А.Г. и др. Справочник по ботанической микротехнике. Основы и методы. М.: Изд-во МГУ, 2004. 311 с.
  2. 2. Жинкина Н.А., Озеров И.А. Методика окрашивания тканей ископаемых растений по Фёльгену // Ботан. журн. 2008. Т. 93. № 6. С. 951–953.
  3. 3. Киричкова А.И. Фитостратиграфия и флора юрских и меловых отложений Ленского бассейна. Л.: Недра, 1985. 223 с.
  4. 4. Носова Н.В. Род Mirovia Reymanowna (Pinopsida): систематика и строение листьев // Палеоботаника. 2013. Т. 4. С. 36–95.
  5. 5. Озеров И.А., Жинкина Н.А., Торшилова А.А. и др. Фёльген-тестирование ядер клеток листа Taxodium dubium (Cupressaceae) из эоценовой Тавдинской флоры Западной Сибири // Палеонтол. журн. 2022. № 3. С. 77–82.
  6. 6. Пирс Э. Гистохимия теоретическая и прикладная. М.: Изд-во иностр. лит-ры, 1962. 962 с.
  7. 7. Эсау К. Анатомия растений. М.: Мир, 1969. 564 с.
  8. 8. Bailleul A.M. Fossilized cell nuclei are not that rare: Review of the histological evidence in the Phanerozoic // Earth-Sci. Rev. 2021. V. 216. 103599.
  9. 9. Bomfleur B., McLoughlin S., Vajda V. Fossilized nuclei and chromosomes reveal 180 million years of genomic stasis in royal ferns // Science. 2014. V. 343. Р. 1376–1377.
  10. 10. Bose M.N., Manum S.B. Mesozoic conifer leaves with ‘Sciadopitys-likeʼ stomatal distribution. A re-evaluation based on fossils from Spitsbergen, Greenland and Baffin Island // Norsk Polarinst. Skrifter. 1990. V. 192. P. 1–81.
  11. 11. Brack-Hanes S.D., Vaughn J.C. Evidence of Paleozoic chromosomes from Lycopod Microgametophytes // Science. 1978. V. 200. P. 1383–1385.
  12. 12. Bussotti F., Gravano E., Grossoni P., Tani C. Occurrence of tannins in leaves of beech trees (Fagus sylvatica) along an ecological gradient, detected by histochemical and ultrastructural analyses // New Phytol. 1998. V. 138. P. 469–479.
  13. 13. Chieco P., Derenzini M. The Feulgen reaction 75 years on // Histochem. Cell Biol. 1999. V. 111. Р. 345–358.
  14. 14. Darrah W.C. A remarkable fossil Selaginella with preserved female gametophytes // Bot. Mus. Leafl. Harv. Univ. 1938. V. 6. P. 113–136.
  15. 15. Glauser A.L., Harper C.J., Taylor T.N. et al. Reexamination of cell contents in Pennsylvanian spores and pollen grains using Raman spectroscopy // Rev. Palaeobot. Palynol. 2014. V. 210. P. 62–68.
  16. 16. Golenberg E.M., Giannasi D.E., Clegg M.T. et al. Chloroplast DNA sequence from a Miocene Magnolia species // Nature. 1990. V. 344. P. 656–658.
  17. 17. Gupta N.S., Yang H., Leng Q. et al. Diagenesis of plant biopolymers: decay and macromolecular preservation of Metasequoia // Org. Geochem. 2009. V. 40. P. 802–809.
  18. 18. Kim S., Soltis D.E., Soltis P.S. et al. DNA sequences from Miocene fossils: an ndhF sequence of Magnolia latahensis (Magnoliaceae) and an rbcL sequence of Persea pseudocarolinensis (Lauraceae) // Amer. J. Bot. 2004. V. 91. P. 615–620.
  19. 19. Kirkpatrick J.B., Walsh E.A., D’Hondt S. Fossil DNA persistence and decay in marine sediment over hundred-thousandyear to million-year time scales // Geology. 2016. V. 44. P. 615–618.
  20. 20. Kivimaenpaa M., Riikontn J., Sutinen S., Holopinen T. Cell structural changes in the mesophyll of Norway spruce needles by elevated ozone and elevated temperature in openfield exposure during cold acclimation // Tree Physiol. 2014. V. 34. P. 389–403.
  21. 21. Kraus T.E.C., Dahlgren R.A., Zasoski R.J. Tannins in nutrient dynamics of forest ecosystems – a review // Plant Soil. 2003. V. 256. P. 41–66.
  22. 22. Logan G.A., Boon J.J., Eglinton G. Structural biopolymer preservation in Miocene leaf fossils from the Clarkia site, northern Idaho // Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1993. V. 90. P. 2246–2250.
  23. 23. Niklas K.J. Organelle preservation and protoplast partitioning in fossil angiosperm leaf tissues // Amer. J. Bot. 1983. V. 70. P. 543–548.
  24. 24. Nosova N., Wcisło-Luraniec E. A reinterpretaion of Mirovia Reymanowna (Coniferales) based on the reconsideration of the type species Mirovia szaferi Reymanowna from the Polish Jurassic // Acta Palaeobot. 2007. V. 47. № 2. P. 359–371.
  25. 25. Nosova N., Yakovleva O., Ivanova A., Kiritchkova A. First data on the fine structure of the leaf cuticle of a Mesozoic conifer, Mirovia Reymanowna (Miroviaceae) // Rev. Palaeobot. Palynol. 2016. V. 233. P. 115–124.
  26. 26. Ozerov I.A., Zhinkina N.A., Efimov A.M. et al. Feulgen– positive staining of the cell nuclei in fossilized leaf and fruit tissues of the lower Eocene Myrtaceae // Bot. J. Linn. Soc. 2006. V. 150. № 3. P. 315–321.
  27. 27. Ozerov I.A., Zhinkina N.A., Torshilova A.A. et al. Use of DNA-specific stains as indicators of nuclei and extranuclear substances in leaf cells of the Middle Eocene Metasequoia from Arctic Canada // Rev. Palaeobot. Palynol. 2020. V. 279. 104211.
  28. 28. Ozerov I.A., Zhinkina N.A., Torshilova A.A. et al. Chromosomes of fossilized Metasequoia from early Oligocene of Siberia // Rev. Palaeobot. Palynol. 2021. V. 287. 104365.
  29. 29. Qu Y., McLoughlin N., van Zuilen M.A. et al. Evidence for molecular structural variations in the cytoarchitectures of a Jurassic plant // Geology. 2019. V. 47. № 4. P. 325–329.
  30. 30. Schoenhut K., Vann D.R., LePage B.A. Cytological and ultrastructural preservations in Eocene Metasequoia leaves from the Canadian High Arctic // Amer. J. Bot. 2004. V. 91. P. 816–824.
  31. 31. Soltis P.S., Soltis D.E., Smiley C.J. An rbcL sequence from a Miocene Taxodium (bald cypress) // Proc. Nat. Acad. Sci. U.S.A. 1992. V. 89. P. 449–451.
  32. 32. Torshilova A.A., Ozerov I.A., Zhinkina N.A., Rodionov A.V. Seeds Alapaja (Cupressaceae) from the Cretaceous of Western Siberia and their paleo-DNA // Rev. Palaeobot. Palynol. 2025. V. 332. 105236.
  33. 33. Treutter D. Significance of flavonoids in plant resistance: A review // Environ. Chem. Lett. 2006. V. 4. № 3. P. 147–157.
  34. 34. Wang X., Liu W., Du K. et al. Ultrastructure of chloroplasts in fossil Nelumbo from the Eocene of Hainan Island, South China // Plant Syst. Evol. 2014. V. 300. P. 2259–2264.
  35. 35. Yang H., Huang Y., Leng Q. et al. Biomolecular preservation of Tertiary Metasequoia fossil Lagerstatten revealed by comparative pyrolysis analysis // Rev. Palaeobot. Palynol. 2005. V. 134. P. 237–256.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека